1. Benzene (1.67μg)
   

2. Toluene (1.67μg)
   

3. Ethylbenzene (1.67μg)
   

4. n-Propylbenzene (1.67μg)
   

5. n-Butylbenzene (1.67μg)
   

6. Amylbenzene (1.67μg)

1. Bibenzyl

2. Anthracene

1. (-)‐Gallocatechin [(-)‐GC](0.80mg/ml)
   

2. Caffeine (0.08mg/ml)
   

3. (-)‐Epigallocatechin [(-)‐EGC](0.80mg/ml)
   

4. (-)‐Catechin [(-)‐C](0.40mg/ml)
   

5. (-)‐Epicatechin [(-)‐EC](0.40mg/ml)
   

6. (-)‐Epigallocatechin Gallate [(-)‐EGCg](0 20mg/ml)
   

7. (-)‐Gallocatechin Gallate [(-)‐GCg](0.40mg/ml)
   

8. (-)‐Epicatechin Gallate [(-)‐ECg](0.20mg/ml)
   

9. (-)‐Catechin Gallate [(-)‐Cg](0.20mg/ml)

Injection Vol. 1.0μl

1. Fisetin (0.25μg)
   

2. Myricetin (0.20μg)
   

3. 7,8-Dihydroxyflavone (0.05μg)
   

4. Luteolin (0 20μg)
   

5. Quercetin (0.20μg)
   

6. 7-Hydroxyflavone (0.10μg)
   

7. Baicalein (0.05μg)
   

8. 6-Hydroxyflavone (0.05μg)
   

9. Flavone (0.05μg)

10. Chrysin (0.05μg)

11. 6-Methoxyflavone (0.05μg)

12. 3-Hydroxyflavone (0.25μg)

13. 5-Hydroxyflavone (0.05μg)
    

1. 去除色譜柱內的緩沖液，鹽，酸的方法：使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。
   例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 沖洗色譜柱內附著物的方法，基線不穩(wěn)時的解決方法

• 樣本不是蛋白質時，使用甲醇或*沖洗。

• 樣品是蛋白質時，使用含0.1%三氟。乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗

1. 短期（數日）保存：
   使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。
   例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 長期（1個月以上）保存：
   使用后，先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱，再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30，保存。

除堿溶液和強酸溶液（pH1.5以下）以外都可以使用。（強堿溶液會使硅膠溶化，強酸溶液會使固定相脫落）
注意點：
溶劑粘度過高會導致壓力上升，請將壓力控制在20Mpa以下。 使用酸性流動相或凝固點高的溶劑后，必須清洗色譜柱。

• 一般情況下緩沖液濃度為0.005~0.02 mol/L即可。

• 流動相在使用前一定要通過0.5μm以下的濾膜過濾。

• 蛋白質反相模式分析時，請使用大孔徑色譜柱（孔隙直徑300?) COSMOSIL Protein - R（粒徑5μm）。

1. 去除色譜柱內的緩沖液，鹽，酸的方法：使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。
   例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 沖洗色譜柱內附著物的方法，基線不穩(wěn)時的解決方法

• 樣本不是蛋白質時，使用甲醇或*沖洗。

• 樣品是蛋白質時，使用含0.1%三氟。乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗

1. 短期（數日）保存：
   使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。
   例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 長期（1個月以上）保存：
   使用后，先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱，再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30，保存。